Plancton du Croisic, je suis tombé dans le Pano ...

[YVES22]

Bonjour à tous.
pour alimenter le sujet "plancton" d'ici ou d'ailleurs mais sans prétendre classer cette bestiole dans une catégorie incertaine : mon dernier coup de filet en septembre : un peu décevant : une soupe de copépodes et divers micro-crustacés ...

La tête :

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La bête dans un mauvais pano mais la photo ne vaut pas le coup d'y perdre plus de temps / ne pas se fier à l'échelle du pano : le sujet doit faire dans les 2 mm :

plancton_cf_copepode1.jpg (90.51 Kio) Vu 1665 fois

Patrice : j'ai besoin d'un conseil : arrives-tu à ramener des espèces bien vivantes de tes expéditions ? Pour ma part, ça n'est pas évident... entre le prélèvement au filet à plancton au large de Saint Malo et l'observation à la maison, il se passe environ 2 heures et je ne vois que des individus HS ou en train de mourir. Pour le dernier prélèvement, j'avais pris mes précautions : glacière pour les échantillons ( et la bière ), mais le résultat était aussi décevant ; ces petites bêtes sont bien fragiles !
Il y a de très faibles coefficients en milieu de semaine prochaine : je referai une sortie "plancton" en espérant mieux .
Après avoir exploré le flacon d'échantillon, est-il judicieux d'y rajouter 10% de formol pour espérer conserver quelques sujets en bon état pour les "longues soirées d'hiver" ???

[6le20]

Bonjour à tous !

Après avoir exploré le flacon d'échantillon, est-il judicieux d'y rajouter 10% de formol pour espérer conserver quelques sujets en bon état pour les "longues soirées d'hiver" ???

Le formol durcit tout. S'il est idéal pour les méduses et autre apparentés, je te le déconseille pour le reste. La solution la plus simple est de mélanger l'eau de mer avec ta récolte et d'ajouter dans les 50% d’alcool industriel à 95°. Les articulations demeurent alors souples et il n'y a pas de prédation à l'intérieur de la récolte...
Le dosage initial n'à pas besoin d'être précis.

Pour conserver en collection, il faut plusieurs bains d'alcool à 70° dont on supprime l'acidité par du carbonate de calcium.

[patriceduros]

Bonjour à tous,

Merci Gérard pour ton retour sur ce fil.
Yves et Sylvain : effectivement, je constate également que les échantillons prélevés ne se conservent pas longtemps. J’essaye de faire l’exploitation dans l’heure qui suit le prélèvement. Pour les copépodes et autres, j’ai utilisé l’alcool.
J’ai utilisé la MZ 7.5 hier pour la première fois. C’est pratique pour visualiser rapidement une plus grande quantité de planton qu’avec le microscope au faible grossissement. C’est plus facile pour sélectionner un individu en particulier. Je trouve que les cnidaires sont particulièrement fragiles ...

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