Thrips sur Laurier tin

[BINO-BONI]

Bonsoir
J'ai découvert une colonie de Thrips en plein développement sur un laurier tin et, ce qui est moins courant, sur les fougères qui se sont développées sous son ombre.
L'identification est assez ardue d'après ce que j'ai pu lire sur les tysanoptères.
A défaut de prises en macro peu satisfaisantes sur animal vivant, je me suis contenté d'une préparation microscopique avec l'intention de reconstituer la bête par voie logicielle.
La photo ci-dessous représentant la partie antérieure de l'insecte a été réalisée au 10x (oculaire 10x) donc avec un grossissement de 100x qui ne permet pas de prendre la totalité du corps lequel mesure environ 1mm.
L'objectif WILL 10x (et non pas WILD) s'est révélé meilleur que le NIKON PLAN 10x lequel a montré une aberration chromatique élevée. Même ici, on remarque une frange bleue "sous les bras". la photo est brute de décoffrage après empilement de 48 prises, aucune retouche. J'ai quand même essayé sans succès de supprimer l'AC.Si vous avez un tuyau...

Côté préparation, j'ai remis la main à la pâte: décoloration à la potasse (avec beaucoup de mal), montage temporaire: eau glycérinée.

Merci de votre contribution à l'identification, ce sera plus facile demain avec le reste du corps .

[BINO-BONI]

Voici le thrips dans son intégralité.

[Fredlab]

Hello

Je trouve que l'ensemble rend très bien.
Les "AC" ne me choquent pas plus que ça - en fait (et je sais de quoi je cause), si on peut sans doute les éliminer quand on a qu'une seule photo idéale (la frange apparait au bord de la zone de contraste, zone de contraste qui est alors bien nette), dans le cas d'un stacking, je dis que c'est impossible à faire.

Pour chipoter, il est dommage qu'une patte soit sous l'abdomen et que le champ couvert (planéité/lumière), ne soit pas homogène. Ce dernier aspect ne facilite pas l'assemblage des tesselles et il serait préférable de ne garder que le centre et multiplier les clichés en tenant compte de ce fait.
Je suis aussi curieux du manque de détails au niveau de l'extrémité des pattes. Il n'y a pas de griffe ?

[Olivier61]

C'est exactement ce que je me disais. N'ont ils pas de griffes ou ont-elles été éliminées par le stacking ?

[BINO-BONI]

Bonsoir

Cette photo est une première à plusieurs titres: première préparation et premier montage d'un insecte depuis bien longtemps, premier panoramique sur un insecte au microscope. vous comprenez pourquoi elle est loin d'être parfaite Et pour la composition, loin de moi l'idée de faire du zoomify, je voulais d'abord résoudre le problème de la largeur du champ vu que je n'ai pas d'objectif 5x acceptable

Précision, ce thrips n'a pas de griffe !!! les autres membres de la familles prélevés sur le laurier tin non plus! J'en suis le premier étonné.

Côté pattes et écarts de luminosité, il faut dire que la préparation a demandé du temps: 48 heures au moins dans la potasse à 10% pour éclaircir mais c'était l'unique spécimen à donner satisfaction, les autres ne s'éclaircissant pas du tout à part les yeux ...! Je pense que ma solution potassique ne titre pas suffisamment, a refaire.
La position de la patte m'a effectivement posé problème mais je n'avais pas le choix du sujet et sous la lamelle, déplacer un membre n'est pas très aisé! Quelqu'un a déjà essayé?

Maintenant pour la technique photo, comme je l'ai déjà dit: je n'ai pas de 5x acceptable ni de 10x apo, donc j'ai essayé un 10x plan NIKON: décevant, un 10x Will, un peu mieux et j'ai retenu un 10x EF LEITZ qui s'en sort pas trop mal. En coparant le 20x planapo NIKON au 10x LEITZ à 20x monté avec l'OPTOVAR (couronne de grossissement variable de l'UNIVERSAL), on change de monde! je vais donc refaire la manip avec le NIKON vu que j'ai appris grâce à Frédéric à manipuler le panoramique, avec Autostich pour commencer.
J'ai triché un peu je l'avoue sur l'AC en essayant de la faire disparaître sur les deux zones les plus voyantes (sous les pattes avant) en utilisant PS de la manière suivante:
1 - sélection de la zone avec le lasso
2 - image / réglages / correction sélective /
3 - choisir la couleur bleu et mettre les curseurs cyan et magenta à 0
éventuellement répéter l'opération sur le cyan
Comme je manipule PS très modestement, j'ai vu qu'il y avait un truc concernant les calques, puisque tous ne permettent pas de faire la correction sélective. J'ai tâtonné et réussi mais sans trop savoir comment
Pas facile pour un daltonien !!!

[vasselle]

Bonsoir
Très belle assemblage.
Cordialement seb

[BINO-BONI]

Merci Sébastien
Le prochain devrait être encore mieux mais que c'est long!...........3 jours pour un tique !!!!

[Gérard-Breton]

Bonjour Jean-Claude,

Si, au lieu de la potasse, tu essayais le chloralphénol ? Action lente (plusieurs jours, en surveillant) mais efficace, je ne me sers plus que de cela (pour les arthropodes). Pour la correction de couleur du fond (et adaptée à un daltonien !) il y a dans PS une commande "accentuation/régler la couleur/correction de la dominante couleur" qui pourra t'être utile.

Cordialement

Gérard Breton

[BINO-BONI]

Bonjour Jean-Claude,

Si, au lieu de la potasse, tu essayais le chloralphénol ? Action lente (plusieurs jours, en surveillant) mais efficace, je ne me sers plus que de cela (pour les arthropodes). Pour la correction de couleur du fond (et adaptée à un daltonien !) il y a dans PS une commande "accentuation/régler la couleur/correction de la dominante couleur" qui pourra t'être utile.

Cordialement

Gérard Breton

Merci Gérard pour ces précisions.
Je pense avoir du chloralphénol quelque part dans le lot de produits que j'ai hérités récemment.
Pour PS, je vais aussi voir cette commande dès ce soir.

[6le20]

Bonjour

je trouve ce premier essai des plus encourageant !
Bravo et vivement les suites...