Le Naturaliste

Merci pour vos remarques!
@ Vardar: oui, je recycle mes lames. Habitude d'enfant d'ouvriers et d'étudiant dans une uni avec ressources restreintes...
@ Fred: J'ai aussi eu ton idée d'un colorant pour tester l'électronégativité, et essayé sans succès jusqu'à présent.
@ Alain: Ok, l'ether est parfait pour le dégraissage, quid de l'acétone ?
- Et tu m'as donné une idée pour mon test: observer le comportement des pseudopodes d'amibes sur lame prétraitée avec NaOH ou HCl. Autre idée dérivée, tremper les deux lames dans une suspension de bactéries et comparer la formation des biofilms.

Voilà, c'est bien utile et sympa ce forum

@ Vardar: recyclage des lames- Évidemment, mon propos concernait mon hobby-lab et cela dépend aussi de ce qu'il y a sur les lames. Pour un projet industriel ou grande série, on ne va pas s'amuser à les nettoyer.
Il ne faut pas négliger le fait que l'on peut réfléchir aux manips pendant l'essuyage des lames

Bernard :
@ Alain: Ok, l'ether est parfait pour le dégraissage, quid de l'acétone ?

L’éther était encore omniprésent dans les labos médicaux il y a encore peu de temps (l'usage en est restreint actuellement), à la différence de l'acétone. La comparaison reste à faire.

Phil a dit :est ce que certains d'entre vous recyclent les lames ?

Je réutilise non seulement les lames mais également les lamelles si bien entendu elles ont été utilisées avec de l'eau .
Je mets l'ensemble dans une barquette plastique avec de l'eau et liquide vaisselle ...rinçage à l'eau chaude puis sêchage avec un chiffon doux....

Vardar a écrit :est ce que certains d'entre vous recyclent les lames ?

Ben oui! lavage eau ou alcool ou fonte du baume puis nettoyage à l'acétone.
Pas les lamelles, faut pas gâcher mais quand même!

Bonsoir,

Je reviens sur mon sujet:
j'ai le sentiment que l'on sous-estime les effets de surface sur le comportement des microorganismes. L'on oublie vite qu'à l'échelle du micromètre les énergies de surface/champs électriques sont énormes. Mon but avec ce petit projet serait de montrer que les lames sont chargées négativement ou positivement selon le traitement NaOH ou HCl.
Alain (Maraussan) m'a donné une idée pour mon test: observer le comportement des pseudopodes d'amibes sur lame prétraitée avec NaOH ou HCl.

Voici un résultat préliminaire:
J'ai déposé des kystes d'amibes sur une lame traitée (et finalement bien rincée à l'eau désionisée) avec HCl et sur une lame traitée avec NaOH. Les trophozoites sont apparus après 2-3 jours entre lame et lamelle - prép gardées en chambre humide.
Il me semble que les différences sont significatives. Voyez par vous-même !
Diable ! déjà qu'il est pratiquement plus possible de mettre un nom de genre sur une amibe sans une grande chance de se tromper vu les changements taxonomiques drastiques causés par les résultats récents de la biologie moléculaire.
L'on devrait éventuellement définir une surface standard pour l'observation

A tous, bonsoir.

J'ai déposé des kystes d'amibes sur une lame traitée (et finalement bien rincée à l'eau désionisée) avec HCl et sur une lame traitée avec NaOH.
Bernard, il manque le test de lames nettoyées à NaOH mais passivées un certain temps (plusieurs heures au minimum) à l'alcool chlorhydrique 1%... je pense que cela change tout.

Oui, merci Alain. J'ai mentionné qu'il s'agit de résultats préliminaires. Mais, ta proposition est très pertinente, je la retiens.
Je devrais aussi trouver un autre type d'amibe, et répéter la manip. Je suis en train d'essayer sur lame nano-hydrophobe.

Bonsoir Bernard,
je n'ai malheureusement pas de source immédiate pour des cultures d'amoeba Chaos carolinense ou Chaos chaos... ces grandes amibes sont spectaculaires à observer, et constituent un bon matériel de test des états de surface.

Bonjour,

Nous avons des soucis pour recouvrir nos lamelles de poly-lysine. Elles restent hydrophobes après une incubation d'une nuit en éthanol + HCl. J'aimerais tester votre méthode au NaOH. Quelle concentration utilisez-vous, s'il vous plait ?

Merci beaucoup !!