Le Naturaliste

Bonjour,

Quel serait le nom d'espèce de cette pezize trouvée jetée sur le bord d'un chemin comme une vieille peau de mandarine ?

Question subsidiaire : pourquoi le rouge congo seul ou le bleu (je ne sais plus quoi) ne colorent pas les asques ? Ici les paraphyses sont naturellement oranges !

Merci

Salut Olivier

On détermine l'amyloïdité et la Dextrinoïdité des Asques en appliquant du melzer sous le micro.
Les asques se colorent de bleu si elle sont amyloïdes, brune pour Dextrinoïde.

Ici il s'agit d'Aleuria aurantia les spores typées et comme tu l'a bien démontré les paraphyses orangés, néanmoins tu aurai pu y mettre une goute de melzer elles se teinte en verte.

jlouis

Bonjour,
Le rouge Congo colore les interfaces donc par conséquent ils les rendent plus visibles que dans l'eau. Si on veut colorer l'intérieur des hyphes, on peut mettre de la phloxine (voir les excellentes micros de Nino). Pour les asques, il est parfois intéressant de mettre du bleu au lactophénol qui a la particularité de colorer les paraphyses ce qui permet de mieux en voir la structure (septée ou pas, forme de la tête dans l'épithécium...). Pour les asques, il est parfois intéressant d'utiliser du Lugol mais dans ce cas il est recommander d'attaquer préalablement la préparation à la potasse et de rincer puis de mettre le Lugol. Ceci permet de colorer certaine partie et donc de mieux observer la tête de l'asque s'il y a réaction évidemment. Le meltzer cité par J-Louis a une action voisine.

Salut !

Le mélange Rouge Congo SDS / Phloxine B donne des résultats stupéfiants, à mon avis bien meilleurs que lorsque ces deux réactifs sont utilisés séparément. Quant au bleu coton, il rend parfois de fiers services pour l'ornementation des ascospores, en plus de son application aux paraphyses dont parle Patrice.
Le protocole (simple à mettre en œuvre) de la double coloration Rouge Congo SDS / Phloxine a été donné par Nino sur le forum (en gros : mettre une goutte de rouge congo SDS, faire chauffer quelques secondes, laisser reposer 10 min en couvrant d'un verre de montre pour ralentir l'évaporation, laver, mettre une goutte de phloxine, chauffer quelques secondes, laver sans attendre et monter entre lame et lamelle). Franchement ça mérite le détour. Même la clarté de la préparation s'en trouve améliorée. Bref, que du bonheur !

En plus tu as trouvé une espèce avec une orementation sporale magnifique (Aleuria aurantia). C'est une occasion rêvée pour essayer ! Mes clichés proviennent d'une autre espèce à spores réticulées, mais plus petite et sur sol sablonneux : Melastiza chateri.

Cordialement,
Eddy

Bonjour à tous

Voila de bien belles micro de Melastiza chateri...Bravo Eddy
Je voudrai juste rajouter surtout pour Olivier, que le Melzer que je cite plus haut n'est pas un colorant à proprement parlé mais plutôt un réactif qui va nous permettre de séparer les espèces amyloïdes des autres...souvent conseiller avant de faire des photos dites "artistique".

jlouis

Bonjour le forum,

JLouis a écrit :Voila de bien belles micro de Melastiza chateri...Bravo Eddy

Merci à toi, tu es très aimable.

JLouis a écrit :Je voudrai juste rajouter surtout pour Olivier, que le Melzer que je cite plus haut n'est pas un colorant à proprement parlé mais plutôt un réactif qui va nous permettre de séparer les espèces amyloïdes des autres...souvent conseiller avant de faire des photos dites "artistique"

Oui surtout si on observe directement dans le Melzer (sans lavage intermédiaire et montage à l'eau ou au chloral lactophénol). C'est bête à dire, mais les photos sont souvent trop rouges, orangées ou jaune sale, avec des contours peu nets. Et puis les paraphyses d'un vert intense ne rendent pas la préparation très lisible.

Par contre je suis en admiration devant les colorations des apex d'asques de Nino (cf les collections). Elles sont tout simplement splendides. Reste plus qu'à trouver une espèce pour tester...

Cordialement,
Eddy

Bonjour,
En effet superbes photos et très bonnes vues des ornementations.
Je joins une micro d'une apothétie de Xanthoria parietina faite selon le protocole que j'ai déjà indiqué, qui permet de voir cet apex.
Il est intéressant de noter aussi que les préparations ne sont pas tout à fait identiques entre le lichénologue et le mycologue.Et pourtant ce sont des ascomycètes dans tous les cas.

Merci pour vos commentaires et aides !

J'ai découvert par ailleurs que Aleuria aurantia est un très bon comestible,... je ne sais pas si il y a un risque de confusion avec une autre espèce sans le microscope ?

Quoi qu'il en soit toute cette petite chimie mycologique est bien intéressante.

Pour dire vrai j'étais fier de mes clichés et en allant voir ceux de Nino, j'ai rougi de honte (sans aucun réactif) !

A+